Влияние инокулята Cylindrocarpon magnusianum на формирование адаптивных реакций растений к стрессовым факторам

Ирина Леонидовна Бухарина, Надежда Александровна Исламова, Амир Ф. Жавад, Мария Аркадьевна Лебедева, Лев Олегович Шашов

Аннотация


Опыты с инокулированными грибом Cylindrocarpon magnusianum растениями показали возможность использования данного микромицета в качестве агента повышения солеустойчивости растений. Изучено влияние инокуляции эндотрофным микромицетом Cylindrocarpon magnusianum на физиолого-биохимические показатели тестовых растений томата при действии солей тяжелых металлов (ТМ) и мятлика лугового при действии температурного стресса. Схема экспериментов включала инокуляцию культурой гриба (контрольная популяция) и популяциями этого гриба, предварительно адаптированными к действию экстремальных факторов. Наиболее значимые эффекты на формирование металл-резистентности растений установлены при инокуляции растений популяциями Cylindrocarpon magnusianum, адаптированными к разным концентрациям солей ТМ, и при выращивании инокулированных растений в условиях высокого содержания солей ТМ в субстрате. У инокулированных растений в условиях высоких температур происходят достоверные изменения содержания аскорбиновой кислоты, фотосинтетических пигментов в листьях, отмечены изменения в распределении пластического материала между надземной частью и корневой системой растений. Эти изменения несут адаптивный характер.

Ключевые слова


Cylindrocarpon magnusianum; микроскопические грибы; тяжелые металлы; температурный стресс; инокуляция; хлорофиллы; каротиноиды; биохимические показатели

Полный текст:

PDF

Литература


Юрков А. П., Крюков А. А., Горбунова А. О. и др. Молекулярно-генетическая идентификация грибов арбускулярной микоризы / Экол. генетика. 2018. Т. 16. № 2. С. 11 – 23.

Wilkinson D. M. At cross purposes / Nature. 2001. V. 412(6846). P. 485.

Gianinazzi S., Gollotte A., Binet M. N., et al. Agroecology: The key role of arbuscular mycorrhizas in ecosystem services / Mycorrhiza. 2010. V. 20. No. 8. P. 519 – 530.

Ijdo M., Cranenbrouck S., Declerck S. Methods for large-scale production of AM fungi: Past, present and future / Mycorrhiza. 2011. V. 21. P. 1 – 16.

Redecker D. Specific PCR primers to identify arbuscularmycorrhizal fungi within colonized roots / Mycorrhiza. 2000. V. 10. P. 73 – 80.

Wubet T., Weiß M., Kottke I., et al. Phylogenetic analysis of nuclear small subunit rDNA sequences suggests that the endangered African Pencil Cedar, Juniperusprocera, is associated with distinct members of Glomeraceae / Mycol. Res. 2006. V. 110. P. 1059 – 1069.

Krüger M., Stockinger H., Krüger C., Schüßler A. DNA-based species level detection of Glomeromycota: one PCR primer set for all arbuscularmycorrhizal fungi / New Phytol. 2009. V. 183. P. 212 – 223.

Rodriguez R. J., White J. F., Arnold A. E., Redman R. S. Fungal endophytes: diversity and functional roles / New Phytologist. 2009. V. 182. P. 314 – 330.

Wang F., Liu X., Shi Z., et al. Arbuscularmycorrhizae alleviate negative effects of zinc oxude nanoparticle and zinc accumulation in maize plants — a soil microcosm experiment / Chemosphere. 2016. V. 147. P. 88 – 97.

Rodriguez R. J., Henson J., Volkenburgh E. V., et al. Stress tolerance in plants via habitat-adapted symbiosis / ISME J. 2008. No. 2. P. 404 – 416.

Tchameni S. N., Ngonkeu M. E. L., Begoude B. A. D., et al. Effect of Trichoderma asperellum and arbuscularmycorrhizal fungi on cacao growth and resistance against black pod disease / Crop Protection. 2011. V. 30. No. 10. P. 1321 – 1327.

Yuan Z. L., Chen Y. C., Ma X. J. Symbiotic fungi in roots of Artemisia annua with special reference to endophytic colonizers / Plant Biosystems. 2011. V. 145. No. 2. P. 495 – 502.

Tkachenko O. V., Evseeva N. V., Boikova N. V., et al. Improved potato microclonal reproduction with the plant growth-promoting rhizobacteria Azospirillum / Agron. Sustain. Develop. 2015. V. 35. No. 3. P. 1167 – 1174.

Sogonov M. V., Velikanov L. L. Soil microfungi from alpine and subnival ecosystems of the Northwestern Caucasus / Микол. и фитопатол. 2004. Т. 38. № 3. С. 50 – 58.

Amaral D. R., Oliveira D. F., Campos V. P., et al. Effect of plant and fungous metabolites on Meloidogyneexigua / Ciencia Agrotecnol. 2009. V. 33. P. 1861 – 1865.

Бухарина И. Л., Исламова Н. А. Исследование пределов устойчивости микроскопических грибов и формирование коллекции перспективных изолятов / Матер. годичного собр. об-ва физиол. растений России «Сигнальные системы растений: от рецептора до ответной реакции организма». — СПб., 2016. С. 362 – 363.

Bukharina I., Franken Ph., Kamasheva A., et al. About the species composition of microscopic fungi in soils and woody plant roots in urban environment / Int. J. Adv. Biotechnol. Res. 2016. V. 7. No. 4. P. 1386 – 1394.




DOI: https://doi.org/10.30906/1999-5636-2019-12-26-32

Ссылки

  • На текущий момент ссылки отсутствуют.


Наши партнеры:



    

 

Подписаться на наши издания Вы можете через почтовые каталоги агентства «Роспечать» и Объединенный каталог «Пресса России», а также на сайтах агентств «УП Урал Пресс», «Информнаука», «Прессинформ» и «Профиздат».

© Издательский дом «Фолиум», 1998–2023