Открытый доступ Открытый доступ  Ограниченный доступ Платный доступ или доступ для подписчиков

Эндопаразитофауна диких жвачных животных в условиях Нечерноземья Российской Федерации

Федор Иванович Василевич, Ирина Игоревна Цепилова, Наталья Валерьевна Есаулова, Светлана Александровна Шемякова, Юрий Анатольевич Ватников, Евгений Владимирович Куликов, Марьяна Замировна Жекамухова

Аннотация


В настоящее время на территории Нечерноземья РФ активно разводят диких жвачных животных, таких как лани, европейские косули, зубры, благородные и пятнистые олени и др. Представлены сведения о видовом и родовом составе гельминтов и простейших, обнаруженых у лосей, пятнистых и благородных оленей, муфлонов, маралов, европейских косуль, ланей и зубров. Всего от вышеуказанных животных отобрано и изучено на наличие эндопаразитов 638 проб из Калужской, Московской, Тверской и Смоленской областей. Работу проводили в 2015 – 2019 гг. в национальном парке, заповедниках, охотхозяйстве и частном крестьянско-фермерском хозяйстве. В условиях Нечерноземья РФ зарегистрированы следующие гельминты и простейшие: 2 вида трематод — Fasciola hepatica и Dicrocoelium lanceatum; 2 вида цестод — Moniezia expansa и M. benedeni; нематоды из 5 родов — Trichostrongylus sp., Nematodirus sp., Trichocephalus sp., Protostrongylus sp., Capillaria sp., а также простейшие из рода Eimeria. Наиболее разнообразная фауна эндопаразитов установлена у жвачных из Калужской и Московской областей. Доминирующими являлись нематоды из рода Trichostrongylus, которые зарегистрированы во всех областях Нечерноземной зоны РФ и встречались у разных видов животных. Яйца и личинки гельминтов обнаружены в 193 пробах, что соответствует 30,25 %. Общая зараженность жвачных животных эндопаразитозами составила 44,98 %.

Ключевые слова


дикие жвачные; эндопаразитофауна; зараженность пробы; гельминты; нематоды; простейшие

Полный текст:

PDF

Литература


Blanchard K. R., Kalyanasundaram A., Henry C., et al. Predicting seasonal infection of eyeworm (Oxyspirura petrowi) and caecal worm (Aulonocephalus pennula) in northern bobwhite quail (Colinus virginianus) of the Rolling Plains Ecoregion of Texas, USA / Int. J. Parasitol. Parasit. Wildlife. 2019. V. 8. P. 50 – 55.

Chernigova S. V., Chernigov Y. V., Vatnikov Yu. A., et al. Special aspects of systemic inflammation course in animals / Vet. World. 2019. V. 12. No. 7. P. 932 – 937. DOI: 10.14202/vetworld.2019.932-937

Choi Y., Mason S., Ahlborn M., et al. Partial molecular characterization of the mitochondrial genome of Baylisascaris columnaris and prevalence of infection in a wild population of Striped skunks / Int. J. Parasitol. Parasit. Wildlife. 2017. V. 6. Issue 2. P. 70 – 75.

Drukovsky S. G., Vilkovysky I. F., Popova I. A., et al. Efficiency of antihelmitic drugs in the treatment of canine intestinal nematodes / J. Pharm. Sci. Res. 2018. V. 10. No. 12. P. 3095 – 3096.

Lenchenko E., Lozovoy D., Strizhakov A., et al. Features of formation of Yersinia enterocolitica biofilms / Vet. World. 2019. V. 12. No. 1. P. 136 – 140.

Motta B., Nägeli F., Nägeli C., et al. Epidemiology of the eye worm Thelazia callipaeda in cats from southern Switzerland / Vet. Parasitol. 2014. V. 203. Issues 3 – 4. P. 287 – 293.

Shamsi S., McSpadden K., Baker S., Jenkins D. J. Occurrence of tongue worm, Linguatula cf. serrata (Pentastomida: Linguatulidae) in wild canids and livestock in south-eastern Australia / Int. J. Parasitol. Parasit. Wildlife. 2017. V. 6. Issue 3. P. 271 – 277.

Vatnikov Yu. A., Kulikov E. V., Kubatbekov T. S., et al. Diagnosis of violations of microcirculation in the late recovery period after thrombosis of cerebral vessels / Prensa Med. Arg. 2019. V. 105. No. 1. P. 1000335.

Woolsey I. D., Webster P., Thamsborg S., et al. Repeated inoculations with the lung and heartworm nematode Angiostrongylus vasorum result in increasing larval excretion and worm burden in the red fox (Vulpes vulpes) / Int. J. Parasitol. Parasit. Wildlife. 2017. V. 6. Issue 3. P. 139 – 145.

Козло П. Г., Буневич А. Н. Зубр в Беларуси. — Минск: Беларус. навука, 2009. С. 148 – 203.

Падайга В. И., Марма Б. Б. Зависимость экстенсивности инвазии косуль некоторыми паразитами от плотности населения и условий обитания / Тр. IX Междунар. конгр. биологов-охотоведов — М., 1970. С. 667 – 672.

Цибизова Е. Л., Аксенова П. В., Ермаков А. М. Динамика и причины смертности зубров Bizon bonasus в питомнике Окского государственного природного биосферного заповедника / Ветеринария. 2015. № 6. P. 13 – 17.

Drozdz J., Demiaszkiewicz A. W., Lachowicz J. The helminth fauna of the roe deer Capreolus capreolus (L.) in a hunting area inhabited by red deer, elk and European bison (Borecka Forest, Poland) over the yearly cycle / Acta Parasitol. 1992. V. 37. No. 2. P. 83 – 88.

Hoberg E. P., Kocan A. A., Rickard L. G. Gastrointestinal strongyles in wild ruminants / Parasitic diseases of wild mammals. — USA: Iowa State University Press, 2001. P. 196 – 197.

Dunham N. R., Henry C., Brym M., et al. Caecal worm, Aulonocephalus pennula, infection in the northern bobwhite quail, Colinus virginianus / Int. J. Parasitol. Parasit. Wildlife. 2017. V. 6. Issue 1. P. 35 – 38.

Gassó D., Feliu C., Ferrer D., et al. Uses and limitations of faecal egg count for assessing worm burden in wild boars / Vet. Parasitol. 2015. V. 209. Issues 1 – 2. P. 133 – 137.

Stroehlein A. J., Young N. D., Gasser R. B. Advances in kinome research of parasitic worms — implications for fundamental research and applied biotechnological outcomes / Biotechnol. Adv. 2018. V. 36. Issue 4. P. 915 – 934.

Назарова Н. С. Влияние акклиматизации и доместикации на зараженность животных гельминтами / Проблемы общей и прикладной гельминтологии. — М., 1973. С. 21 – 35.

Пужаускас Р. В. Зависимость зараженности косуль в Литве гельминтами от экологических факторов / Тр. IX Междунар. конгр. биологов-охотоведов. — М., 1970. С. 685 — 687.

Baiyegunhi L. J. S., Oppong B. B. Commercialisation of mopane worm (Imbrasia belina) in rural households in Limpopo Province, South Africa / Forest Policy Econ. 2016. V. 62. P. 141 – 148.

Говорка Я., Маклакова Л. П., Митух Я. и др. Гельминты диких копытных восточной Европы. — М.: Наука, 1988. С. 66 – 72.

Ковальков М. П., Шостак С. В. Роль Беловежской пущи в восстановлении популяций редких копытных животных / Заповедники Белорусии. — Минск, 1980. С. 101 – 108.

Binhong H. U., Kulikov E. V., Vatnikov Yu. A., et al. Pathological changes in microcirculation in the early recovery period of ischemic stroke / Prensa Med. Arg. 2019. V. 105. No. 1. P. 1000332.

Гадаев Х. Х. Легочные нематоды у диких жвачных в Чеченской Республике / Теор. и практ. борьбы с паразит. болезнями. 2015. № 16. С. 92 – 94.

Муромцев А. Б. Основные гельминтозы мелкого рогатого скота и диких жвачных животных в Калининградской области (эпизоотология, патогенез, лечебно-профилактические мероприятия). — Калининград, 2010. С. 128 – 134.

Никитин В. Ф. Желудочно-кишечные трематодозы жвачных. — М., 1985. С. 81 – 103.

Shamsi S., Loukopoulos P., McSpadden K., et al. Preliminary report of histopathology associated with infection with tongue worms in Australian dogs and cattle / Parasitol. Int. 2018. V. 67. Issue 5. P. 597 – 600.

Whitlock S. E., Pereira M. G., Lane J., et al. Detecting fluoxetine and norfluoxetine in wild bird tissues and feathers / Environ. Int. 2019. V. 126. May. P. 193 – 201.

Кузнецов Д. Н., Ломакин В. В. Структура нематодофауны диких копытных животных Беловежской пущи. — М.: Институт паразитологии РАН, 2001. С. 196 – 198.

Rostami A., Riahi S. M., Ghadimi R., et al. A systematic review and meta-analysis on the global seroprevalence of Trichinella infection among wild boars / Food Control. 2018. V. 91. P. 404 – 411.

Bandino E., Goddi L., Mulas M., et al. Trichinella britovi from domestic to wild animals of Sardinia, Italy / Vet. Parasitol. 2015. V. 212. Issues 3 – 4. P. 262 – 266.

Erster O., Roth A., King R., Markovics A. Molecular characterization of Trichinella species from wild animals in Israel / Vet. Parasitol. 2016. V. 231. P. 128 – 131.

Zohdy S., Valenta K., Rabaoarivola B., et al. Causative agent of canine heartworm (Dirofilaria immitis) detected in wild lemurs / Int. J. Parasitol. Parasit. Wildlife. 2019. V. 9. P. 119 – 121.

Давыдова О. Е., Шемяков Д. Н., Цепилова И. И. Методы гельминтокопрологических исследований при диагностике гельминтозов животных. — М.: ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К. И. Скрябина, 2016. С. 7 – 16.

Byrne R. L., Fogarty U., Mooney A., et al. A comparison of helminth infections as assessed through coprological analysis and adult worm burdens in a wild host / Int. J. Parasitol. Parasit. Wildlife. 2018. V. 7. Issue 3. P. 439 – 444.

Poglayen G., Marchesi B., Dall’Oglio G., et al. Lung parasites of the genus Metastrongylus Molin, 1861 (Nematoda: Metastrongilidae) in wild boar (Sus scrofa L., 1758) in Central Italy: An eco-epidemiological study / Vet. Parasitol. 2016. V. 217. P. 45 – 52.

Varcasia A., Scala A., Zidda A., et al. First record of Gongylonema nepalensis in domestic and wild ruminants in Europe / Vet. Parasitol. 2017. V. 246. P. 11 – 18.




DOI: https://doi.org/10.30906/1999-5636-2021-9-31-37

Ссылки

  • На текущий момент ссылки отсутствуют.


Наши партнеры:



  

 

Подписаться на наши издания Вы можете через почтовые каталоги агентства «Роспечать» и Объединенный каталог «Пресса России»а также на сайтах агентств «УП Урал Пресс», «Информнаука»«Прессинформ» и «Профиздат».

© Издательский дом «Фолиум», 1998–2022